Тест НМО с ответами по теме “Подготовка тканей к гистологическому исследованию”

Вопросов в тесте: 36

Тест НМО по теме Подготовка тканей к гистологическому исследованию

Тест непрерывного медицинского образования (НМО) является важным этапом повышения квалификации медицинских сотрудников. Успешное прохождение итоговой аттестации по направлению «Гистология» во многом зависит от подготовки. На странице представлен тест с правильными ответами по теме «Подготовка тканей к гистологическому исследованию». Из всех нижеперечисленных сложных фиксаторов формалин не содержит жидкость Карнуа. Из паренхиматозного органа кусочек ткани для исследования иссекают перпендикулярно его поверхности с учетом строения органа. Иммерсионые методы фиксации инактивируют ферменты за счет денатурации белков и дегидратации.

1. Декальцинирующую жидкость меняют через

  1. 1-2 часа;
  2. 24-48 часа;
  3. каждую неделю;
  4. каждые 2 недели.

2. Для качественного уплотнения материала его необходимо выдержать

  1. как минимум в 2-х сменах парафина при -50ºС;
  2. как минимум в 2-х сменах парафина при -56ºС;
  3. как минимум в 3-х сменах парафина при -50ºС;
  4. как минимум в 3-х сменах парафина при -56ºС.

3. Завершение декальцинации определяют по

  1. изменению цвета образца;
  2. отсутствию хруста при протыкании образца иголкой;
  3. повышению pH раствора до 8.0;
  4. помутнению декальцинирующей жидкости;
  5. понижению pH раствора до 5.0.

4. Из всех нижеперечисленных органов аутолиз быстрее всего начинает развиваться в

  1. миокарде;
  2. печени;
  3. поджелудочной железе;
  4. селезенке;
  5. скелетных мышцах.

5. Из всех нижеперечисленных сложных фиксаторов формалин не содержит

  1. жидкость Буэна;
  2. жидкость Карнуа;
  3. жидкость Орта;
  4. жидкость Рего;
  5. жидкость Ценкера.

6. Из паренхиматозного органа кусочек ткани для исследования иссекают

  1. безразлично к ориентации вырезаемого кусочка;
  2. безразлично к строению исследуемого органа;
  3. перпендикулярно его поверхности с учетом строения органа;
  4.  тангенциально к поверхности органа и с учетом его строения.

7. Иммерсионые методы фиксации

  1. инактивируют ферменты за счет вытеснения воды из межклеточной жидкости;
  2. инактивируют ферменты за счет денатурации белков и дегидратации;
  3. инактивируют ферменты за счет резкого сдвига pH в кислую сторону;
  4. инактивируют ферменты за счет резкого сдвига pH в щелочную сторону.

8. К заливочным средам относятся

  1. ацетон, спирт, пикриновая кислота;
  2. воск, карбовакс, терменвокс;
  3. парафин, целлоидин, желатин;
  4. спирт-эфир.

9. К простым иммерсионным фиксаторам относится

  1. жидкость Буэна;
  2. жидкость Карнуа;
  3. жидкость Рего;
  4. формалин;
  5. ценкер-формол.

10. К физическим методам фиксации относят

  1. применение абсолютного спирта;
  2. применение ацетона;
  3. применение низкой температуры;
  4. применение раствора формалина.

11. Каждый кусочек ткани маркируется

1) перед заливкой в фиксирующий раствор; +
2) перед наклеиванием на предметное стекло;
3) перед проводкой;
4) после фиксации.

12. Лучшим фиксатором для исследования липидов является

1) пикриновая кислота;
2) уксусная кислота;
3) хромовая кислота;
4) четырехокись осмия. +

13. Лучшим фиксатором для исследования митохондрий и комплекса Гольджий является

1) пикриновая кислота;
2) уксусная кислота;
3) хромовая кислота; +
4) четырехокись осмия.

14. Лучшим фиксатором для исследования срочных биопсий и гистохимических исследований является

1) ацетон; +
2) бутиловый спирт;
3) изоамиловый спирт;
4) метиловый спирт;
5) этиловый спирт.

15. Лучшим фиксатором для мазков крови является

1) ацетон;
2) бутиловый спирт;
3) изоамиловый спирт;
4) метиловый спирт; +
5) этиловый спирт.

16. Минимальное время промывки материала после формалиновой фиксации при условии небольшого размера кусочков составляет

1) 1 час; +
2) 12 часов;
3) 2 часа;
4) 24 часа;
5) 3 часа.

17. На поперечном срезе исследуют

1) серозные оболочки;
2) стенки паренхиматозных органов;
3) стенки полых органов; +
4) эндокринные железы.

18. Нейтрализация формалина производится добавлением

1) бихромата калия;
2) молибдата аммония;
3) углекислого кальция; +
4) цитрата натрия;
5) этилового спирта.

19. Объем фиксирующей жидкости должен превышать объем кусочков

1) не мене чем в 2-3 раза;
2) не менее чем в 10-15 раз; +
3) не менее чем в 20 раз;
4) не менее чем в 5 раз;
5) соответствовать объему кусочков.

20. Обязательным условием для фиксации материала срочных биопсий является

1) наличие спирта в фиксирующей жидкости;
2) наличие сулемы в фиксирующей жидкости;
3) наличие формалина в фиксирующей жидкости;
4) повышенная как минимум до 56 градусов С температура; +
5) пониженная как минимум до 12 градусов С температура.

21. Оптимальный объем костной ткани для успешного проведения декальцинации вне зависимости от способа (химический, электролитический) составляет

1) 0,5 куб. см;
2) 1 куб. см; +
3) 2 куб. см;
4) 4 куб. см.

22. Освобождение ткани от формалина после фиксации проводится с помощью

1) длительного пребывание в кислом растворе;
2) промывки в 90º-96º спирте;
3) промывки в проточной воде; +
4) промывки в смеси пикриновой кислоты и 70º-80º спирта.

23. Показанием для замены фиксирующей жидкости на новую порцию является

1) её помутнение или изменение цвета; +
2) изменение её вязкости;
3) увеличение её объема;
4) уменьшение её объема.

24. При гистохимических методах исследования физические (низкотемпературные) методы фиксации предпочтительнее, потому что они

1) менее ресурсозатратны;
2) на порядки быстрее инактивируют ферменты; +
3) не деформируют ткани;
4) не приводят к денатурации белка.

25. При исследовании патологически измененных органов обязательным условием для вырезки является

1) вырезка всего объема измененной ткани;
2) вырезка максимально большого участка измененной ткани;
3) вырезка минимально необходимого участка измененной ткани;
4) вырезка с захватом здоровой ткани. +

26. Проводка материала по спиртам возрастающей концентрации имеет целью

1) обезвоживание и обезжиривание материала;
2) уплотнение и обезвоживание материала;
3) уплотнение и обезжиривание материала;
4) уплотнение, обезвоживание и обезжиривание материала. +

27. Промежуточным растворителем для парафина является

1) ацетон;
2) карбовакс;
3) ксилол или толуол; +
4) пчелиный воск;
5) спирт-эфир.

28. Сильнее всего сморщивает ткани

1) фиксация ацетоном; +
2) фиксация бутиловым спиртом;
3) фиксация метиловым спиртом;
4) фиксация формалином;
5) фиксация этиловым спиртом.

29. Спиртовая фиксация по сравнению с формалиновой

1) менее требовательная к размерам кусочков;
2) полностью блокирует ферменты при любой концентрации этанола и при любой температуре;
3) протекает быстрее;
4) сильнее сморщивает ткани. +

30. Толщина кусочка ткани перед заливкой в фиксирующие смеси не должны превышать

1) 0,5-1см; +
2) 1,5-2.0 см;
3) 1-1,5 см;
4) размеры не имеют значения.

31. Фиксирующее действие этанола реализуется за счет

1) дегидратации; +
2) денатурации белков;
3) деполимеризации углеводов;
4) обратимого обезжиривания клеток;
5) функционального истощения ферментных систем.

32. Формалин (формол) является

1) 10% водным раствором формальдегида;
2) 15% водным раствором формальдегида;
3) 20% водным раствором формальдегида;
4) 35-40% водным раствором формальдегида; +
5) 5% водным раствором формальдегида.

33. Формалин имеет кислое значение pH так как он

1) является альдегидом ацетилсалициловой кислоты;
2) является альдегидом глутаровой кислоты;
3) является альдегидом лимонной кислоты;
4) является альдегидом муравьиной кислоты; +
5) является альдегидом уксусной кислоты.

34. Формалиновый пигмент можно удалить из ткани с помощью

1) промывки в большом количестве воды; +
2) промывки в ксилоле;
3) промывки в спиртах возрастающей концентрации;
4) промывки в спиртах понижающейся концентрации.

35. Цель фиксации

1) обезвоживание ткани;
2) обезжиривание тканей;
3) сохранение прижизненных структур ткани; +
4) уплотнение тканей.

36. Что из нижеперечисленного нельзя делать с материалом перед его погружением в фиксирующий раствор?

1) ополаскивать водой; +
2) ополаскивать раствором фиксатора;
3) опускать в раствор фиксатора сразу же после иссечения;
4) проводить его маркировку.

Понравилась статья? Поделиться с друзьями:
Тесты НМО
Добавить комментарий

;-) :| :x :twisted: :smile: :shock: :sad: :roll: :razz: :oops: :o :mrgreen: :lol: :idea: :grin: :evil: :cry: :cool: :arrow: :???: :?: :!: